1、定位准确：取材部位解剖水平的准确定位要求误差应 ≤ 1mm。注意各组实验动物组织取材区位及方位的一致性和代表性。
2、操作迅速：组织离开活体后，以速度浸入醛类固定液，0.5 min或2 min。 先准备好2mlEP管，里面盛满预冷的醛类固定液。提示：在解剖前做灌注固定，而对脑、脊髓、睾丸等组织则必须做灌注固定。
3、标本尺寸大小：组织块的粒径大小必须与固定液的穿透率(≤0.5mm)相适应，样品块过大，内部固定不良;样品过小，观察内容受限。可参照下图取材。提示：把较大标本块修整成符合要求的形状时，须事先准备一个蜡盘，滴入醛类固定液，把标本浸在液滴中修整，确认每个小标本条都包含需要的结构内容，再用牙签挑出三小块，放入2ml EP管，密闭，4℃保存。
4、操作轻柔、清洁：取材操作动作始终保持轻柔，尽可能避免金属器具对组织的夹持、挤压或牵拉，所用器具必须清洁，使用缓冲液清洗。
5、保持低温环境：为降低自溶酶活性，在4℃低温条件下取材，容器和器械预冷;将修整好的标本块放入醛类固定液后，4℃冰箱保存。
提示：
❶初固定之后，尽早进入制备程序;存放3天以上，须更换固定液。
❷注意：既要保持低温，又要避免EP管接触冰块，固定液 要充满标本小瓶，盖紧瓶盖，用胶布加固，以免邮寄途中液体渗出。
为了得到精美的TEM照片，请务必认真做好关键的第一步取材!
1、确认细胞数量≥105，根据研究目的，选择取材时间;
2、调整醛类固定液pH与培养基pH相同并等渗;
3、贴壁细胞用柔软细胞刮子轻轻刮起，成细胞悬液;
4、把细胞悬液置入洁净离心管，或圆底EP管(2ml);
5、选择合适的离心速度和时间，3000-5000转，5~10分钟，形成细胞团块;
6、用牙签轻轻挑起细胞团块，若致密柔韧，即弃上清，注入新鲜醛类固定液，4℃保存;
7、及时送实验室，进入电镜样品制备程序。
提示：
A.取离心好的细胞团块时，如细胞分散开，可在离心管中注入约5μl血清再离心，至EP管底部出现致密细胞团块。
B. 细胞大小不同，离心富集速率和时间不同。事先检索文献，避免反复离心损伤细胞。
C. 在上述第(5)步骤之前，用缓冲液离心1~2次，可以清除培养基中的杂质。但此 操作要注意：缓冲液要新鲜，缓冲液与培养基等渗，pH近似。由于各实验室配制缓冲液方法和保存时间等差别很大，由缓冲液欠佳带来的损伤不容忽视，请使用前斟酌。
D. 快递标本注意：
❶4℃保存;
❷避免标本瓶直接接触冰块;
❸固定液要充满样品容器，确认盖紧瓶盖，用胶布加固，以免邮寄途中液体渗出(此种情况常见)。
